임상 화학 검사를 위한 혈액 검체 수집 및 처리에 대한 지식
임상 검사의 목적은 임상 사용을 위한 정확하고 신뢰할 수 있는 실험적 진단 기반을 제공하는 것입니다. 실험 데이터의 신뢰성을 확보하기 위해서는 진단검사의학에서는 TQC(Total Quality Control)와 TQC(Full Process Quality Control)를 준수해야 합니다. 이는 임상의 신뢰성에 영향을 미치는 모든 요소와 연관성에 대한 품질 관리를 의미합니다. 실험작업 전 과정에 대한 품질관리 및 품질관리를 수행합니다. 다음은 임상 화학 검사를 위한 혈액 표본 수집 및 처리에 관해 제가 여러분께 전해드리는 지식입니다.
1. 임상화학 검사용 혈액검체의 정의
임상화학 검사용 혈액검체는 하나 이상의 임상화학 검사 항목을 완료하기 위해 채취한 혈액검체를 말한다. .항응고 혈액과 비항응고 혈액을 포함한 일정량의 혈액.
2. 혈액 검체 채취
(1) 채취 장소
1. 정맥혈 채취 : 가장 일반적으로 사용되는 혈액 채취 방법입니다. 흔히 사용되는 정맥은 전주정맥과 등수근정맥이며, 소아와 신생아에서는 경정맥과 전천문정맥이 사용되는 경우도 있다.
2. 동맥혈 채취 : 주로 혈액 가스 분석에 사용됩니다. 일반적으로 사용되는 동맥은 대퇴 동맥, 상완 동맥, 요골 동맥 및 제대 동맥입니다.
3. 모세혈관 채혈: 미량의 혈액만 필요한 실험이나 유아에 적합합니다. 일반적으로 사용되는 부위는 귓불과 손가락 끝이며, 때로는 어린이의 엄지발가락과 발뒤꿈치입니다. 채혈침은 피부에 2mm(<2.5mm) 깊이까지 관통되어야 하며, 채혈 부위에 염증, 부종 등이 없어야 합니다.
(2) 검체 종류
임상화학 검사를 위한 혈액 시료는 혈청, 혈장, 전혈의 3가지 유형으로 구분됩니다. 혈청과 혈장은 일반적으로 임상에서 사용됩니다. 전자에 피브리노겐이 포함되어 있지 않다는 점을 제외하면 대부분의 다른 화학 성분은 동일합니다. 전혈은 적혈구의 성분이 혈장의 성분과 유사한 경우에만 사용됩니다. 혈액가스 분석, 헤모글로빈 전기영동 등에 사용되며, 일반적으로 대부분의 임상화학 분석에서는 전혈을 사용하지 않습니다.
3. 전혈을 혈청 또는 혈장으로 가공
혈액 검체 채취 후 혈청(혈장)은 혈액 세포와 접촉하여 전혈에서 자연적으로 분리되어야 합니다. 가능한 한 빨리. 일반적으로 혈액 채취 후 2시간 이내에 혈청 또는 혈장을 분리해야 합니다. 전혈을 혈청 또는 혈장으로 가공하는 과정은 원심분리 전, 원심분리 중, 원심분리 후의 세 단계로 나뉘며, 각 단계마다 구체적인 요구 사항이 있습니다.
(1) 원심분리 전 단계
색인서를 수집하여 원심분리하기까지의 기간이다.
1. 혈청: 일반적으로 검체는 원심분리 전에 스스로 응집되도록 해야 합니다. 혈전을 떼어내기 위해 나무 막대기를 사용하지 마십시오. 일반적으로 혈액 검체는 실온(22~25oC)에 30~60분 동안 방치하면 자발적으로 완전히 응집될 수 있지만, 냉장 보관된 검체는 응고제를 첨가하면 천천히 응집됩니다(검체를 천천히 뒤집어서 5~10회 혼합해야 함). 응고제가 효과가 있는지 확인하기 위한 수집).
2. 혈장: 혈장 검체가 필요한 경우 항응고제가 함유된 혈액 검체 채취관을 사용해야 하며, 채혈 직후 채혈관을 가볍게 뒤집어 5~10회 혼합해야 합니다. 항응고 기능) 5~10분 후에 혈장을 분리할 수 있습니다.
3. 검체 냉장 보관은 세포 대사를 억제하고 특정 온도 의존성 성분을 안정화시킬 수 있습니다. 그러나 전혈 검체는 일반적으로 냉장 보관할 수 없습니다. 혈청 칼륨 측정 검체는 2시간 이상 냉장 보관하면 안 됩니다. . 혈액 카테콜아민, pH/혈액 가스, 암모니아, 젖산, 피루브산, 가스트린, 갑상선 호르몬 등을 검출하려면 냉장 검체가 필요합니다.
검체를 냉장 보관해야 하는 경우(2~8oC) 채취 후 즉시 검체를 얼음 조각이나 얼음물 혼합물에 넣어야 하며(큰 얼음 조각은 허용되지 않음) 검체 사이가 완전히 접촉되어야 합니다. 그리고 냉장된 재료가 보장되어야 합니다. 냉장된 물체가 표본의 높이에 도달하는지 확인하십시오.
4. 대사 억제제 및 보존제: 혈액 샘플에 첨가된 특정 첨가제는 세포 대사를 억제하고 혈액 샘플 보관 중 분석물 농도의 변화를 방지할 수 있습니다.
혈당을 측정할 때 혈액에 불화나트륨을 첨가하면 혈구가 분리되지 않으면 포도당은 섭씨 22~25도에서는 24시간, 섭씨 2~8도에서는 48시간 동안 안정합니다. 신생아 및 어린이의 경우 적혈구의 부피가 크고 불화나트륨으로 세포의 해당작용을 조절하기 어렵습니다. 포름알데히드-옥살산칼륨 항응고제 보존제는 혈당 측정에 적합하지 않습니다. 혼합물은 효소 활성을 억제할 수 있으므로 효소학에는 적합하지 않습니다.
5. 검체 수집 장소: (1) 검체는 수집 후 가능한 한 빨리 실험실로 보내야 하며, 특히 수집 구역의 온도가 22oC를 초과하는 경우 (2) 채취 후 혈관을 막아야 합니다. 혈액 검체 수집 시, 튜브 입구는 튜브 내 내용물의 진동을 줄이고 완전한 응고를 촉진하며 검체 증발, 오염 및 튀는 것을 방지하기 위해 위쪽 및 수직으로 배치되어야 합니다. (3) 수집된 혈액 검체는 다음과 같이 조심스럽게 다루어야 합니다. 검체 튜브가 진동하는 것을 방지하십시오. 용혈은 측정 결과에 영향을 줄 수 있습니다. 심각한 영향(증가 결과)이 있는 항목에는 젖산탈수소효소, 혈청 아스파라긴산 아미노전이효소, 혈청 칼륨, 헤모글로빈이 있으며, 주목할만한 효과를 나타내는 항목에는 혈청 철(?), 혈청 알라닌 산성 아미노전이효소(?) 및 혈청 티록신(?)이 있습니다. ; 약간 영향을 받음(증가): 총 단백질, 알부민, 혈청 인, 혈청 마그네슘, 혈청 칼슘 및 산성 포스파타제(4)는 피해야 합니다. 감광성 분석물은 인공 조명 또는 햇빛(UV)에 노출됩니다. 예를 들어, VA, VB6, 베타카로틴, 포르피린, 빌리루빈 등을 측정하는 경우 검체 튜브를 알루미늄 호일이나 이와 유사한 재질로 감싸서 보호해야 합니다.
6. 검체 운반: 전혈 검체는 혈액 채취 장소에서 검사실까지 가능한 한 빨리 운반해야 합니다. 운반 거리가 긴 경우, 특히 분석물의 안정성에 영향을 미치기 때문입니다. 필요한 경우 혈청 또는 혈장을 분리하여 검체를 운반하는 동안 검체의 포장, 온도 요구 사항, 처리 방법 등에 주의를 기울여야 합니다. 분석된 구성 요소의 안정성, 시료 튜브는 운송 중에 닫혀 있어야 하며 수직으로 위쪽으로 배치되어야 합니다.
7. 실험실은 검체를 접수하고 원심분리된 검체를 준비합니다. (1) 검체 수집 기록이 있어야 합니다(검사 목록을 주의 깊게 확인하고 관련 상황을 주의 깊게 기록해야 하며 검체 수령 및 처리는 (2) 받은 검체는 원심분리를 위해 분류하고 준비해야 합니다. (3) 실험실에서 검체를 받은 후에도 검체 튜브는 튜브 입구가 위를 향하도록 단단히 밀봉된 상태로 보관되어야 합니다. 수직 위치에. 튜브 플러그를 제거한 후 혈액 내 CO2 손실로 인해 pH가 증가하고 이온화된 칼슘 및 산성 인산분해효소가 감소합니다. 특히 pH의 변화는 일부 테스트 결과의 정확성에 영향을 미칩니다. 시간이 충분해야 합니다. 항응고제를 첨가해야 합니다. 혈액 샘플은 즉시 원심분리할 수 있습니다. 촉진제를 첨가한 샘플은 혈액 수집 후 5~15분 후에 최대한 빨리 원심분리할 수 있습니다. (아연, 리튬, 프로토포르피린 등 측정용) .) 원심분리할 필요가 없습니다. (5) 냉장 보관합니다. (2) ~8oC) 표본은 원심분리 준비가 될 때까지 이 온도를 유지해야 합니다. (6) 검체를 원심분리하기 전에 시험관 벽과 관 마개에 부착된 혈전을 떼어내기 위해 작은 나무 막대기나 유사한 장비를 사용하는 것은 권장되지 않습니다. . 시험관 벽을 노출시키거나 튜브 플러그를 제거해야 하는 경우 매우 조심하고 조심스럽게 다루십시오.
(2) 원심분리 단계
지시약이 원심분리기 안에 있는 시간입니다.
1. 원심분리 시간 및 상대원심력(RCF) : 임상화학분석을 위한 혈액샘플을 원심분리할 때 RCF(1000~1200)μg, 원심분리 시간은 5~10분이다.
2. 온도 조절 원심분리: 원심분리 중에 발생하는 열은 분석물질의 안정성에 도움이 되지 않습니다. 임상 화학 분석을 위해 혈액 샘플을 원심분리할 때는 온도 조절 원심분리기를 사용해야 합니다. 일부 온도 의존성 분석물(예: 부신피질 자극 호르몬, 순환 AMP, 카테콜아민 등)은 4oC에서 분리해야 하며, 특별한 온도 요구 사항이 없는 분석물의 경우 원심 분리 온도를 20oC~22oC로 설정해야 합니다. 분쇄하면 혈청 칼륨 측정값이 증가합니다. 냉장 보관된 검체는 필요한 온도에서 원심분리해야 합니다.
3. 재원심분리에 관하여: 검체의 원심분리는 한번에 완료하는 것이 가장 좋습니다. 다시 원심분리가 필요한 경우, 분리된 물질이 포함된 혈액 검체는 마지막 원심분리 이후의 시간이 매우 짧아야 합니다. 다시 원심분리하면 안 됩니다.
(3) 원심분리 후 단계
지수는 원심분리 후 검출에 사용된 일정량의 혈청 또는 혈장을 빼내기 전까지의 시간을 말한다.
1. 접촉된 혈액 세포 및 혈전으로부터 혈청 또는 혈장의 분리는 채혈 후 가능한 한 빨리(2시간 이내) 완료되어야 합니다.
2. 분리된 혈청 또는 혈장의 보관: 실험실의 실내 온도와 혈청 또는 혈장의 보관 온도 및 시간은 분석물질의 안정성과 측정 결과의 정확성에 중요한 매개변수입니다. (1) 혈청 또는 혈장은 22oC~25oC에서 8시간 이내로 보관해야 한다. (2) 8시간 이내에 실험이 완료되지 않을 경우에는 혈청 또는 혈장을 2oC~8oC에서 보관해야 한다. 48시간 이내에 완료될 수 없거나 분리가 필요한 경우 혈청 또는 혈장을 48시간 이상 보관해야 하는 경우 -20oC에서 보관해야 합니다. (4) 검체를 반복적으로 냉동 및 해동할 수 없습니다. ), 성에가 없는 냉장고에 보관할 수 없습니다(검체의 온도 변화가 발생할 수 있음). (5) 원심분리 후 분리 겔(겔 장벽)에 있는 혈청은 2~5일 동안 보관할 수 있지만, 겔이 확보되어야 하며, 겔이 아닌 분리 물질을 사용할 경우에는 원심분리 후 즉시 혈청이나 혈장을 제거해야 합니다. (6) 혈청 또는 혈장은 밀봉된 시험관에 보관해야 한다.
4. 혈청 또는 혈장분리물질
전혈로부터 혈청 또는 혈장을 분리하는 물질을 말하며 겔물질과 비겔물질을 포함한다.
(1) 겔 물질
비점도 및 특수 중력(혈청 또는 혈장과 혈전 사이)(gRCF 원심분리)을 갖는 일종의 불활성 겔 물질입니다. 10분 동안 혈청 또는 혈장과 혈전 사이에 뚫을 수 없는 겔 장벽을 형성하여 혈청 또는 혈장을 혈액 세포 및 이와 접촉하는 혈전으로부터 분리할 수 있습니다.
(2) 젤이 아닌 재질
불활성 재질(유리, 플라스틱, 섬유, 펠트 등)로 만든 비드, 디스크, 필터, 섬유 플러그 등으로 구성됩니다. .). 혈청 또는 혈장과 혈전 사이에 비중이 있어 혈관에 천천히 첨가하면(1000~1100) gRCF로 10분간 원심분리하면 혈액을 통해 혈청 또는 혈장과 혈액 세포 사이의 공간으로 이동할 수 있습니다. 혈전, 혈청이나 혈장을 분리할 수 있는 경계면을 형성합니다.
(3) 완전 겔 튜브 시스템
이 시스템은 불활성 겔 물질, 촉진제 또는 항응고제 조성물을 포함하는 진공 채혈 튜브(실리콘 처리된 플라스틱 튜브)로 구성됩니다. 사용시에는 해당 제품에 해당하는 성능인증서와 유효기간이 있어야 하며, 유효기간 내에 올바르게 사용해야 한다는 점을 유의하시기 바랍니다.
검사 방법의 개선이 늘어나고, 고정밀 자동화 기기의 대규모 적용과 검사의 과학적인 관리, 검사 인력의 기술 수준이 지속적으로 향상됨에 따라 영향 요인은 다음과 같습니다. 검사 과정에서의 간섭이 크게 감소했으며, 분석 및 탐지 이전에 상대적으로 다양한 영향이나 간섭 요인이 더 많이 존재합니다. 현대 진단검사의학에서는 검사 표본의 보관 및 수집에 대해 더 높은 요구 사항을 제시하고 있으며 환자는 표본 수집에 대한 기본 지식을 이해하고 지침을 따르며 검사 결과를 더욱 정확하고 정확하며 신뢰할 수 있도록 실험실 직원과 협력해야 합니다.
외래검진을 위한 일반적인 검체로는 일반적으로 혈액(손가락혈, 정맥혈), 소변, 대변, 뇌척수액, 흉막삼출액, 복수, 전립선액, 정액, 질분비물 등이 있다. 이러한 표본 수집 보관 및 보관에 대한 특정 요구 사항이 있습니다.
검체 채취 시 주의 사항
1. 혈액 검체
흡연, 식사, 운동 등 생리적 요인의 영향을 피하십시오. 기분 변화, 임신, 신체 자세 등은 혈액의 특정 구성 요소의 변화에 영향을 미칠 수 있으며 일부는 일별 변화도 있습니다. 혈액 검체 채취 조건은 가능한 한 일관성을 유지해야 하며, 이를 피할 수 없는 경우에는 검체에 해당 요소를 기록해야 합니다.
1. 말초혈
일반적으로 왼손 약지 안쪽에서 혈액을 채취하는데, 이 부위에는 동상, 염증, 부종, 손상이 없어야 합니다. 이 부품이 요구 사항을 충족하지 않으면 다른 핑거 부품으로 교체하십시오. 화상 환자의 경우 손상되지 않은 피부에서 혈액을 수집하도록 선택할 수 있습니다. 일부 일상적인 혈액 검사(백혈구 수, 분류 등)는 생리적 요인에 따라 변동이 크기 때문에 비교 시 조건은 최대한 일치해야 합니다. 응고 기능 검사 항목(혈소판 수, 출혈 시간, 응고 시간 등)을 검사할 때 검사 결과에 영향을 미치지 않도록 항응고제 및 응고 촉진제를 복용하는 것은 바람직하지 않습니다.
2. 정맥혈
항응고 정맥혈장을 사용해야 하는 각종 지혈 및 혈전 검출 사업을 제외하면 현재 검사 항목의 대부분은 정맥혈을 이용해 직접 분석이 가능하다. 혈청. 혈청 검사 항목 중 일부(혈당, 혈중 지질 등)는 식습관 및 주야간 요인에 따라 크게 영향을 받습니다. 일반적으로 이른 아침 공복 혈액 검체는 혈액 내에서 더 빨리 부패하는 것이 적합합니다. ACP 활성 등의 효소 활성 측정) 이러한 항목의 검출은 시기적절하고 신속해야 합니다. 운동 등의 요인. 채혈 시, 특히 혈청 칼륨, LDH 등을 측정할 때 용혈을 피하는 것도 매우 중요합니다. 다양한 검사를 위해 주입하는 쪽의 정맥에서 채혈하지 마세요.
2. 소변 검체
소변 검체 역시 혈액 검체와 마찬가지로 식이요법, 운동, 약물복용량 등의 요인, 특히 식이요법의 영향을 많이 받기 때문에 일반적으로 말하면 , 아침 소변은 무작위 소변보다 낫습니다. 아침소변은 아침에 일어나서 처음으로 채취한 소변을 말하며, 농도가 더 진하고 산성화되어 있으며, 형성된 성분(혈액세포, 상피세포, 관 등)이 상대적으로 농축되어 관찰하기 쉽습니다. 무작위 소변은 채취가 편리한 무작위 소변을 말하며, 식이요법, 운동, 약물 등에 의해 영향을 크게 받으며, 식이성 단백뇨, 식이성 당뇨병, 비타민C 방해 등 위양성 및 위음성이 발생하기 쉽습니다. 잠혈 결과가 있습니다. 식후 소변(점심 식사 후 2시간 동안 채취한 환자의 소변)은 요당, 소변 단백질 및 유로빌리노겐 검사에 적합합니다. 이때 소변 검체는 검사 민감도를 높이고 경미한 병변을 감지할 수 있습니다. 12시간 소변 세포수는 아디스(전날 밤 8시부터 다음날 8시까지 방광을 비운 후 모든 소변을 채취)로 시간이 오래 걸리고 세균이 쉽게 번식할 수 있기 때문에 방부제가 들어있습니다. 포름알데히드를 첨가해야 합니다.
24시간 소변(첫날 오전 8시부터 다음날 오전 8시까지 방광을 비운 후 채취한 모든 소변) 내 단백질, 당, Ca2 등 화학물질 정량, 검출 물질마다 다른 방부제가 필요합니다. 깨끗한 중간 소변은 대부분 소변 세균 배양에 사용되며, 이를 세척하고 청소한 후 검체를 채취합니다. 모든 소변 검체는 최소 12m1, 바람직하게는 50ml의 충분한 양으로 채취해야 하며, 여성 환자의 경우 질 분비물과 월경혈이 소변 검체를 오염시키지 않도록 해야 합니다.
3. 대변 검체
대변 검체의 검출은 소화기 질환을 판단하는 데 중요한 참고 가치가 있습니다. 채취시에는 클린라벨을 사용하여 점액, 고름, 혈액 등의 이상성분이 포함된 분변을 선별하여 표면, 깊이, 분변 끝부분에서 외관상 이상이 없는 분변을 채취하여야 한다. 기생충을 검색하고 알 수를 세기 위해서는 24시간 동안 대변을 수집해야 합니다. 이질 아메바 영양체에 대한 검사는 배변 후 즉시 이루어져야 하며, 고름, 혈액, 연약한 부위에서 물질을 채취하여 따뜻하게 보관한 후 검사를 위해 보내야 합니다.
주혈흡충 알 확인 시 점액, 고름, 혈액을 채취해 미라시디아가 부화할 때 최소 30g 이상의 대변을 채취해 최대한 빨리 처리해야 한다. 요충 알을 확인하려면 배변 전 낮 12시나 이른 아침에 투명한 필름 면봉으로 항문 주위 주름 부분을 닦아낸 후 즉시 현미경 검사를 실시합니다. 잠혈검사(화학적 방법), 검사 전 3일 동안 육류 및 동물성 혈액이 함유된 식품을 섭취할 수 없으며, 철분, 비타민C 등의 채취도 금지됩니다. 모든 대변 검체는 수집 후 1시간 이내에 검사하여 생성된 성분이 소화 효소와 pH에 의해 파괴되는 것을 방지해야 합니다.
4. 뇌척수액 검체
뇌척수액 검체는 채취 후 즉시 검사를 위해 보내야 합니다. 너무 오랫동안 방치하면 세포 변성, 파괴 등 검사 결과에 영향을 미칠 수 있습니다. 잘못된 계산 및 분류: 일부 화학 물질 예를 들어 포도당은 분해 함량을 감소시킵니다. 박테리아 자가분해는 박테리아 검출 속도에 영향을 미칩니다. 뇌척수액을 추출한 후 보통 3개의 멸균 튜브로 나누어 첫 번째 튜브는 세균 배양용, 두 번째 튜브는 화학 분석 및 면역학적 검사용, 세 번째 튜브는 일반 특성 및 현미경 검사용으로 사용합니다. 세 개의 튜브의 순서가 바뀌어서는 안 됩니다. 검체 채취가 어렵기 때문에 모든 검사 및 시험 과정에서 안전에 유의해야 합니다.
5. 흉부 및 복수액 검체
뇌척수액 검체와 마찬가지로 채취 후 안전에 유의하고 적시에 검사를 위해 보내주십시오. 일반적으로 일반 세포검사용 튜브, 생화학적 검사용 튜브, 세균배양용 튜브 등 3개의 튜브로 나누어지는데, 그 순서는 뇌척수액용 튜브와 동일한 것이 바람직하다.
6. 전립선액 검체
전립선액 검체는 전립선을 마사지한 후 채취하며, 양이 적을 경우에는 유리 슬라이드에 직접 떨어뜨려 검사를 받습니다. 검체가 증발하여 건조되는 것을 방지하기 위해 적시에 주의를 기울여야 합니다.
마사지로 전립선액이 생성되지 않는 경우에는 마사지 후 소변침사물을 확인해볼 수 있습니다.
7. 질 분비물 검체
질 검체 수집에 사용되는 기구는 성교, 목욕, 공개 검사, 개방형 세척 및 약물 국소 적용을 금지해야 합니다. 샘플은 깨끗해야 합니다. 일반적으로 생리식염수에 적신 면봉을 질이나 질만곡 뒤쪽과 자궁경관구에서 채취하여 생리식염수 도말표본을 만든 후 분비물 검체를 관찰합니다. 월경 중인 여성 환자는 질 분비물 검체를 검사해서는 안 됩니다. ;