혈액세포 분석기, 임상적으로 혈액분석기 또는 혈액계, 혈구 계수기라고도 합니다.
혈액세포 분석기는 병원 임상검사에서 매우 널리 사용되는 도구 중 하나이다. 이전의 혈액 재래식 검사의 가장 원시적인 수단은 현미경 인공경검사를 통해 기초의학이 발달하면서 첨단 과학기술의 응용으로 혈액세포 분석기는 경찰을 대신하여 혈액 재래식 분석을 하는 중요한 수단이 되었다. 특히 분류한 혈액세포 분석기. (XFA6000Intelligent 지능형 자동 혈액 세포 분석기)
혈액 세포 분석기 성능 특성:
1, 성능 특성:
1, 현재
2, 백혈구 3 분류 히스토그램과 적혈구, 혈소판 히스토그램의 감별계표에서 지능적인 자동계 감별선은 분석 결과를 더욱 정확하게 만든다.
3, 강력하고 안정적인 제어 및 분석 기능을 제공하는 세계 최고의 듀얼 코어 임베디드 디지털 회로 시스템.
4, 데이터 분석은 대규모 통합 전화 (ARM) 기술을 사용하여 가장 안정적인 분석 결과를 제공합니다.
5, 원클릭 조작 또는 필기 입력 정보, XFA6000Intelligent 는 혈액 샘플을 자동으로 흡입하여 희석, 분석 및 정확하게 19 개의 매개변수와 3 개의 히스토그램 22 개의 검사 결과, 중국어 인터페이스, 100 만 개의 결과 저장 (히스토그램 포함) 을 제공합니다
6, 완전히 폐쇄된 천자 샘플, 운영자에 대한 바이오오염 위험을 효과적으로 방지합니다. XFA6000Intelligent 는 대규모 테스트 작업을 완벽하게 충족하는 18 개의 샘플 비트를 갖추고 있으며 응급 삽입 기능을 갖춘 XFA6000 Intelligent 를 통해 실험실에서 전례 없는 효율성과 성과를 창출할 수 있습니다.
둘째, 일상적인 유지 관리는 간단합니다.
테스트 전에 전원 키를 켜면 컴퓨터 자체 테스트, 플러싱, 관류 채널, 공백 값 확인 등 모든 준비 작업을 수행할 수 있습니다. 테스트가 완료되면 셧다운 키 XFA6000Intelligent 를 누르면 모든 채널을 자동으로 헹구고 자동으로 종료하여 지능적인 유지 관리를 할 수 있습니다.
3, 지능형 차단 설계:
XFA6000Intelligent 의 검사부는 루비 소재를 사용하며 구멍 지름이 정확하고 매끄럽고 접착하기 쉽지 않습니다. 또한 폐색 모니터링 기능을 갖추고 있으며, 차단 프로그램을 통해 양수 음압 세척과 전자 연소를 통해 차단을 제거할 수 있습니다.
4, 안전 및 환경 보호:
XFA6000Intelligent 는 시안화물없는 시약 검사 헤모글로빈을 사용하여 번거로운 폐기물 처리를 없앴습니다. 주사 바늘 안팎 벽 자동 청소 기능을 통해 운영자에게 안전을 보장합니다. 고급스러운 인간성의 외관은 검사 환경을 더욱 편안하고 안전하게 만들 것입니다.
그럼 혈액일상적 검사에서 어떤 사항을 주의해야 더 나은 채혈을 할 수 있어 혈액세포 분석기 분석 결과를 쉽게 할 수 있을까?
1, 표본 수집
정확하고 신뢰할 수 있는 검사 결과를 얻으려면 고품질의 표본을 얻어야 합니다. 고품질 표본은 고품질 검사의 첫 걸음입니다. 혈액 표본 중 각 세포의 완전한 형태를 보장하는 것은 혈액 재래식 검사용 고품질 표본의 가장 기본적인 요구 사항이다. 혈액 세포 검사 표본의 제비는 채집과 항응고 2 단계로 나뉜다.
1. 표본 채집
채혈 부위에 따라 혈액검사 표본을 얻는 가장 일반적인 방법은 정맥채혈과 말단 모세혈관채혈이다. 각종 문헌에 따르면 정맥혈 혈액은 가장 믿을 만한 표본으로, 손가락피는 말단 모세혈관 혈액 샘플 중 정맥혈과 차이가 가장 작고 안정적인 혈액 샘플로 나타났다. 정맥혈에 비해 손가락혈의 정확성과 반복성이 여전히 떨어지는 것으로 나타났다. 백혈구 수는 현저히 높고 (+8) 혈소판 수는 현저히 낮다 (-9).
따라서 대부분의 전문가들은 혈액 검사, 특히 혈액 분석기를 사용할 때는 정맥혈을 사용해야 한다고 조언한다.
2. 표본의 항응고제
혈액 검사에 사용되는 혈액샘플은 항응고제 항응고제를 통해 처리되어야 하며, 현재 많은 항응고제 중 EDTA 소금 (EDTA-Na2, EDTA-K2) 채혈 요인의 영향 (생리적 요인, 채혈 부위 등) 을 제외하고, 대부분의 경우 혈액 샘플의 품질은 혈액과 항응고제의 비율에 달려 있다. 혈액 비율이 너무 높으면 항응고제가 상대적으로 부족해 혈장에 미세 응고가 발생할 가능성이 높아지고, 혈구 분석기에 사용될 때 미세 응고가 기기를 차단하고 일부 검사 지표에 영향을 줄 수 있다. 혈액 비율이 너무 낮고 항응고제가 상대적으로 과잉되어 검사 지표에 심각한 영향을 미칠 수 있다. 혈액이 EDTA 항응고제를 거치면 백혈구의 형태가 바뀌는데, 이 변화는 시간과 EDTA 농도와 관련이 있다. EDTA 의 최적 농도 (혈액과 비교) 는 1.5mg/ml 로 혈액이 적으면 EDTA 농도가 2.5MG 이것은 자동 혈구 분석기를 사용할 때 특히 중요하다.
정맥혈과 말초혈은 모두 항응고제를 통해 전혈 표본으로 응고될 수 있다. (표본에는 희석액이 함유되어 있지 않거나 표본에 미치는 희석에 미치는 영향이 매우 적다.) 말초혈항응고 표본이 적절한 혈액과 항응고제의 비율에 도달하는 것은 매우 어렵다는 것을 알 수 있다. 따라서 대부분의 전문가들은 전혈 비율을 준비하는 것이 매우 어렵다고 조언한다. 따라서 대부분의 전문가들은 혈관이 정맥혈을 채집할 것을 제안한다.
< P > 거울 검사든 혈액세포 분석기를 사용하든 표본에 희석된 희석액 중 절대다수에 항응고제가 함유되어 있어 일정량의 희석액에 미량의 정맥혈이나 말단 혈액 (10-40μl) 을 직접 첨가하면 흔히 말하는 사전 희석 표본으로 준비된다. 대부분의 경우, 사전 희석 표본의 제비는 말초혈의 혈액 샘플에 적용된다.
2, 표본의 희석
혈액은 혈구와 혈장으로 구성된 붉은색 점성 현액이다. 혈구 검사 수를 할 때 직접 혈액수를 쓰는 것은 어렵다. 거울 검사든 혈구 분석기든 혈액은 정확하고 정확하게 희석해야 혈구 검사 수를 할 수 있다. 혈구 분석기의 기본 원리에 근거하여 혈구 분석기의 설계 응용에서 희석 배수와 계산 용량은 가장 중요한 설계 지표 중 하나이다. 희석 배수가 너무 낮으면 세포가 줄을 서서 센서를 통과하는 일치 결손이 형성된다. 희석 배수가 너무 크면 일정량 내 혈구 수가 너무 적어져 혈액세포 검사의 측정 정확도에 심각한 영향을 미칠 수 있다.
3, 표본의 저장
항응고제는 시간과 농도에 따라 혈구 형태에 영향을 미칠 수 있다. EDTA 항응고 정맥혈 표본으로 표본 수집 후 5 분 이내 또는 30 분 후 8 시간 이내 (실온) 검사로 최상의 검사 결과를 얻을 수 있다는 연구결과가 나왔다. 혈소판과 백혈구 분류에 대한 정확한 데이터가 필요하지 않은 경우 표본은 2 C ~ 8 C 조건에서 24 시간까지 예치할 수 있다.
사전 희석 표본은 일반적으로 표본 준비 후 10 분 이내에 측정해야 합니다. 희석액에 세포 안정제를 첨가하면 사전 희석 표본의 보관 시간도 4 시간을 초과할 수 없다.
결론적으로 혈액 검사 결과에 영향을 미치는 요인이 많기 때문에 정확한 검사 데이터를 얻으려면 실험의 모든 단계에서 엄격하게 조작 절차를 따라야 한다. 이 글에서 다룬 내용은 단지 혈액 정규 검사 중 주의사항에 대한 부분적인 요약일 뿐, 존재할 수 있는 부족과 결함, 또는 일년 내내 임검 일선에 있는 선생님들에게 비판, 시정을 요청해 주시기 바랍니다. (데이비드 아셀, Northern Exposure (미국 TV 드라마), 건강명언)
4, 혈액세포 분석기 계수법:
셀 수가 많고, 빠르고, 표준화가 쉽고, 계산 정확도가 높기 때문에 대규모 인구 건강 검진에 적합하지만 특별한 장비가 필요합니다.
일부 인적 요소 (예: 항응고제 부족), 병리 상황 (예: 핵적혈구, 거대한 혈소판, 혈소판 응집 등) 은 백혈구 수를 방해할 수 있다. 사용하기 전에 반드시 NCCLS 규정 방법에 따라 기구를 교정해야 하며, 일상적인 품질 관리 업무를 진지하게 견지해야 한다.
5, 적혈구 수의 혈액분석기법 검출 원리:
혈액세포분석기법: 저항항과/또는 광산란 원리를 사용한다.
혈액세포분석기의 네 가지 주요 속성인
혈액세포분석기는 혈액계라고도 하며 혈액분석기-현재 의료분야에서 보편적으로 사용되는 의료기구로 혈액세포분석기의 사용은 임상혈액검사의 질과 효율을 크게 높였다. 그러나 이런 첨단 의료 기기는 혈구 형태와 구조 등을 감별하는 데 아직 완벽하지 못하여 현재는 전혈구 분석의 체질 수단으로만 사용할 수 있다. 의문을 만났을 때 현미경으로 혈편을 재검토하고 확인, 수정 또는 보충해야 보고를 할 수 있다. 그렇지 않으면 오진과 오진을 일으키기 쉽다. 검토 기준과 관련해서는 기존 의학검사 교과서와 조작 절차 모두 명확하게 논술되지 않았다. 이를 위해, 우리는 실천과 체득에 근거하여 국내외 관련 문헌을 결합하여 그 기준, 내용, 방법 등에 대해 초보적인 검토를 하였다.
1 검토 기준
어떤 상황에서 검토를 해야 하는지, 지금까지 통일된 기준이 없고, 혈액세포 분석기가 경고 신호 (FLAG) 를 주는 한 모두 검토해야 한다는 제안이 있어 범위를 지나치게 넓힐 수밖에 없다. 예를 들어, 급성 출혈로 외상을 입은 한 환자는 혈액분석기가 적혈구와 헤모글로빈이 낮다는 신호를 보내므로 반드시 혈액검사를 할 필요는 없다. 또 예를 들어 치료 과정에서 혈액학 검사를 자주 하는 환자는 매번 재검토할 필요가 없는 경우가 많다. Dotson 은 피클 검토 기준 (film review criteria) 을 논술할 때 각 실험실이 자체적으로 검토할 매개변수, 히스토그램 또는 분산형 차트를 규정해야 한다고 제안했다. 혈액세포분석기 운행신호신호 (instrument fuction figs) 나 해석신호신호 (interpretive flag messages) 등이 나타나는 것은 모두 검토의 조건 중 하나이지만 혈액세포분석기 상태와 환자 상황 등을 결합해야 한다.
2 검토 내용
많은 사람들은 검토가 백혈구 분류라고 생각하지만 그렇지 않다. 검토에는 적혈구, 백혈구, 혈소판의 형태 관찰이 포함되어야 한다. 혈소판 또는 백혈구 수를 추정합니다 (기기에 의해 주어진 데이터와 일치하는지 확인). 혈소판 집결이나 적혈구 집결 여부, 특수한 형태의 이상 세포와 기생충 등을 관찰한다.
3 검토자에 대한 요구 사항
검토자는 먼저 분석기에서 제공하는 다양한 매개 변수, 히스토그램, 분산형 차트 및 힌트 신호를 자세히 읽어야 합니다. 존재할 수 있는 혈액학 이상 또는 기술적 영향 요인 등에 대한 초보적인 인상을 가지고 있다. 환자의 임상 상황 (예비 진단 등 포함) 과 함께 검토의 초점을 파악합니다.
혈액을 충분히 섞어서 가능한 한 빨리 혈장으로 밀고 염색한다. EDTA 항응고제 코팅은 피부천자혈직접 코팅과는 달리 세포 형태면에서 약간의 차이가 있다. 또한 항응고제는 대부분 체외에서 한동안 저장되어 있어 세포 형태에도 영향을 미친다.
4 검토 방법
먼저 저배경 또는 고배경으로 혈액과 세포 분포, 혈소판이나 적혈구가 모이는 것 (줄, 무더기), 꼬리에 크고 이상 세포 더미가 있는지 등을 살펴본다. 유경으로 도포한 두께의 적당한 곳에서 혈편을 훑어보고 적혈구, 백혈구, 혈소판의 형태를 자세히 관찰하고 그 수를 추정한다. 관찰 결과가 기기 보고서와 일치하면 어떤 보충 실험도 하지 않고 기기 측정 결과에 따라 보고서를 보낼 수 있다.
빈혈 또는 기타 혈액병 환자의 경우 적혈구 수 및 관련 지표 (예: MCV, MCH, MCHC), 적혈구 볼륨 분포 폭 (RDW), 히스토그램 또는 분산형 차트에 이상이 있는 경우 적혈구의 크기, 형태, 내용물 관찰에 중점을 둡니다. 이상이 있으면 설명하고 보고해야 한다. 혈액이 체외에서 너무 오래 저장되거나 도포될 때의 다른 기술적 원인으로 인해, 때때로 혈편의 일부 부위에 가짜 과녁형 적혈구, 입형 적혈구, 가짜 구형 적혈구 등이 나타날 수 있으며, 경험이 없는 검사자들은 이를 진정한 이형 적혈구로 취급하는 경우가 많다. 가장 간단한 식별 방법은 도료의 다른 영역을 탐색하는 것입니다. 진짜 이형 적혈구인 경우 전체 조각 (개별 영역이 아님) 에서 동일한 예외를 볼 수 있습니다.
혈소판의 수와 히스토그램, 혈소판의 평균 볼륨 (MPV) 이상, 혈소판의 분포 폭 (PDW) 이 증가하면 혈구를 찾아 먼저 혈소판 수를 추정한다. Willians 등은 정상적인 경우 혈판이 두껍고 적당한 영역 (적혈구마다 서로 닿았지만 겹치지 않음) 에서 각 유경 시야에는 약 8 ~ 15 개의 혈소판이 있다고 생각한다. 또는 적혈구 10 ~ 30 개마다 혈소판을 볼 수 있습니다. 물론 이것은 대략적인 추정 [2] 일 뿐이다. 우리의 경험에 따르면, 평소 주의 깊게 관찰하고 경험을 쌓은 후 혈편을 훑어보면 혈소판 수를 대략적으로 추정하는 것은 어렵지 않지만, 동시에 혈소판의 형태를 주의 깊게 관찰한다.
백혈구 수 또는 히스토그램이 비정상인 경우 먼저 혈편을 살펴보고 백혈구 수를 추정하며 유치하거나 비정상적인 백혈구가 있는지 관찰한다. 기기 보고서와 일치하지 않거나 다른 이상이 발견되면 현미경 아래 백혈구 분류 수를 진행한다. 백혈구 분류에 관해서는 일반 혈액검사원들이 모두 익숙한 것 같다. 그러나 정확한 분류를 위해서는 아직 많은 어려움이 있다. 개별 세포의 분류 기준은 아직 완전히 통일되지 않았다.
외주혈 일반 백혈구 분류에서 과립구를 중성, 호산구, 알칼리성 세 가지 범주로 나누면 된다. 때때로 감염과 혈액병 진단을 돕기 위해 임상의는 중성세포를 분엽핵, 막대기 핵세포, 만유세포, 중유세포 등으로 세분화할 것을 요구했다. 막대 모양의 핵과 분엽핵 세포의 경계를 구분하는 것은 줄곧 의학 검사계를 괴롭히는 큰 난제였다. 역사적으로, 막대 핵에 대한 정의가 다르기 때문에, 보고된 막대 핵의 비율은 0 ~ 5 부터 12 ~ 18 까지 차이가 난다. 이를 위해 미국 임상병리 학회 (CAP) 는 다음과 같은 정의를 추천한다. "성숙한 입자계 백혈구, 휘어지고 띠 모양의 핵형, 핵엽 사이에 실루엣이 없는 미세한 실 (threadlike filament) 이 형성되어 막대형 핵이라고 한다. 만약 핵엽을 연결하는 다리 (bridge) 안에 염색질이 있다면, 이 다리는 가는 실이 아니라 막대 모양의 핵이다. " "핵 왜곡 (twist), 감겨 일부 핵이 다른 부분 위에 눌려 전체 핵의 모양이 잘 보이지 않으면 분엽핵으로 판정해야 한다." 이 건의는 이미 미국 임상검사실 표준화위원회에 의해 채택되었다. 이 기준에 따르면, 막대 핵세포의 기준값은 5 ~ 10 [3] 이어야 한다. 하지만 이 기준에도 불구하고 검사원 개인의 판단과 해석이 다르기 때문에 실제 업무에서는 갈등과 불일치가 남아 있다. 각 실험실은 통일된 기준에 따라 품질 관리를 수행해야 한다.
외주혈의 림프세포는 매우 이질적인 세포로 알려져 있다. 바이러스, 독소 등 항원의 자극으로 그 중 일부는 증식하고 혈장 세포나 유치세포 (모세포) 로 전환되어 다양한 형태 변화를 일으킨다. 세포 부피가 커지면 세포질이 많아지고, 청색염이 깊어지고, 어떤 것은 빈 거품이 함유되어 있다. 핵은 불규칙한 형태를 띠고 염색질은 푸석해졌고, 간혹 핵분열이 은은하게 보인다. 그러나 풍부한 임상 경험이 부족하면 백혈구의 유치한 세포로 오인될 수 있다.
말초 혈액 검사 작업은 간단하지만 기술성이 뛰어나며 검사자의 주관적인 판단을 위주로 한다. 우수한 검사자는 환자의 임상증상, 혈액 정규 히스토그램에 따라 혈액검사를 열심히 하고 종합적인 분석을 통해 다양한 흔한 빈혈, 백혈병, 감염 등 질병을 적시에, 초보적으로, 심지어 명확한 진단을 받을 수 있도록 해야 한다.